谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）试剂盒说明书
微量法 100T/96S
注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。
测定意义：
GSH-Px是谷胱甘肽氧化还原循环中催化还原型谷胱甘肽（GSH）氧化的主要酶之一。GSH-Px不仅能够特异地催化还原型谷胱甘肽与ROS反应，生成氧化型谷胱甘肽GSSG，从而保护生物膜免受ROS的损害，维持细胞的正常功能；而且具有保护肝脏、提高机体免疫力、拮抗有害金属离子对机体的伤害和增加机体抗辐射等能力。
测定原理：
GSH-Px催化有机过氧化物氧化GSH，产生GSSG；谷胱甘肽还原酶（GR）催化NADPH还原GSSG，再生GSH，同时NADPH氧化生成NADP+；NADPH在340 nm有特征吸收峰，而NADP+没有；通过测定340 nm光吸收减少速率来计算GSH-Px活性。
自备仪器和用品：
低温离心机、水浴锅、可调节移液器、酶标仪、96孔板、和蒸馏水。
试剂组成和配置：
试剂一：液体120mL×1瓶，室温保存。
试剂二：粉剂×1瓶，4℃保存。
试剂三：液体10μL×1支，-20℃保存。
试剂四：液体200μL×1瓶，4℃保存。
粗酶液提取：
GSH-Px测定操作：
1. 酶标仪预热30 min，调节波长到340 nm。
2. 混合试剂在25℃或者37℃（哺乳动物）水浴中预热30min。
3. 混合试剂配制：临用前，在试剂二中加入试剂一20 mL，充分震荡溶解后加入全部试剂三，混匀。（当天用完）
4. 试剂四的稀释：吸取21.5μL试剂四，加入5mL蒸馏水充分混匀，临用前配制，配制好的试剂当天使用。
5. 测定管：依次在96孔板中加入20μL上清液、160μL预热的混合试剂、20μL稀释后的试剂四，迅速混匀后于340nm处测定第30 s和第210s的吸光值，分别记为A1和A2。△A测定管= A1﹣A2。
GSH-Px活性计算：
使用96孔板测定的计算公式如下
(1). 按蛋白浓度计算
GSH-Px活力单位定义：一定温度中，每mg蛋白每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。
GSH-Px (nmol/min/mg prot)=[△A÷ε÷d×V反总×109]÷（Cpr×V样）÷T
=1072×△A÷Cpr
(2). 按样本质量计算
GSH-Px活力单位定义：一定温度中，每g样本每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。
GSH-Px (nmol/min/g 鲜重)=[△A÷ε÷d×V反总×109]÷(W×V样÷V样总)÷T
=1072×△A÷W
（3）按细胞数量计算
活性单位定义：一定温度中，每104个细胞每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。
GSH-Px (nmol/min/104 cell)= [△A÷ε÷d×V反总×109]÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T
=1072×△A÷细胞数量
（4）按液体体积计算
活性单位定义：一定温度中，每毫升液体每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。
GSH-Px (nmol/min/mL)=[△A÷ε÷d×V反总×109]÷V样÷T
=1072×△A
ε：NADPH摩尔消光系数6.22×103L/mol/cm；d：96孔板光径，0.5 cm；V反总：反应体系总体积，200μL=2×10-4 L；106：1 mol=1×106μmol； Cpr：上清液蛋白浓度（mg/mL）；W ：样品质量；V样：加入反应体系中上清液体积，20μL =2×10-2 mL；V样总：提取液体积，1 mL；T：反应时间，3 min。
注意事项：
（1）样品处理等过程均需要在冰上进行，且须在当日测定酶活力；
（2）混合试剂和底物液须临用前配制，配完后置于冰上，当天使用完；
（3）测定过程操作须迅速；
（4）细胞中GSH-Px活性测定时，细胞数目须在300万-500万之间，细胞中GSH-Px的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理，不能用细胞裂解液处理细胞。
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资料/datasheet
