| 货号 | 纯度 | 规格 | 目录价 | 会员价 | 库存 | 数量 | 购买 |
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| AS012147-100管/96样 | 96T | ¥2200.00 | 登录查看 |
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海藻糖-6-磷酸合成酶（Trehalose-6-phosphate- Synthase ，TPS） 试剂盒说明书
分光光度法 50 管/48 样
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
海藻糖是由两个葡萄糖分子以α , α- 1- 1 糖苷键连接而成的一种非还原双糖， 广泛存 在于细菌、酵母菌、霉菌、食用菌、低等植物、昆虫、 无脊椎动物和高等植物等多种有机体 中。海藻糖的非还原性决定了它对酸、碱、高温等的稳定性。另外， 它本身具有很强的吸水 性，使它在生物体内具有抗脱水作用，在逆境条件下可通过识别外界刺激、产生和传递信号、 基因表达和代谢调节来保护植物免受不良环境的伤害。
植物体内主要以葡萄糖为底物合成海藻糖，该反应首先在海藻糖-6-磷酸合成酶
（trehalose-6-phosphate synthase ，TPS）的作用下，催化尿苷二磷酸葡萄糖（UDPG）和 6- 磷酸葡萄糖反应生成中间产物6-磷酸海藻糖， 再在海藻糖-6-磷酸磷酸酶 （trehalose
6-phosphate phosphatase ，TPP）的作用下去磷酸化，生成海藻糖。因此，测定TPS活性对于
研究植物逆境具有重要意义。
测定原理：
TPS 催化 UDPG 与 G6P 生成海藻糖-6-磷酸，同时产生 UDP；UDP 在丙酮酸激酶与乳 酸脱氢酶作用下，氧化 NADH 为 NAD+，NADH 的下降速率与 UDP 含量成正比，通过 340nm 吸光度下降速率反映 TPS 活性。
需自备的仪器和用品：
分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制：
提取液：液体 100mL×1 瓶， 4℃保存；
试剂一：粉剂×1 瓶， -20℃保存； 临用前加入 10mL 试剂五溶解，用不完的试剂分装后-20℃ 保存，禁止反复冻融；
试剂二：粉剂×2 瓶， -20℃保存；临用前每瓶加入 25mL 试剂五溶解；现配现用；
试剂三：粉剂× 1 瓶， -20℃避光保存；临用前加入 0.1mL 试剂五溶解，用不完的试剂分装后 -20℃保存，禁止反复冻融；
试剂四：100μL×1 瓶， 4℃避光保存；临用前低速离心，以防止试剂沾在管壁；
试剂五：液体 100mL× 1 瓶，4℃保存；
工作液的配制： 临用前， 先配置好 1 瓶试剂二和试剂三， 然后在试剂二瓶中加入 25μL 试剂 三和 25μL 试剂四， 充分混匀，现配现用。
样品测定的准备：
1、细菌或细胞的处理：收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量 （104 个）： 提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液）， 超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3S，间隔 10S，重复 30 次） ；8000g ，4℃离心 10min，取上清， 置冰上待测。
2、组织的处理： 按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液） ，冰浴中匀浆。 8000g
4℃离心 10min，取上清， 置冰上待测。 测定步骤
1 、在 EP 管中加入如下试剂
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试剂名称(μL） |
测定管 |
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样本 |
150 |
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试剂一 |
150 |
混匀， 30℃反应 20min ，95℃水浴 2min 灭活， 冷却至室温。10000g 4℃离心 5min，取上层 反应液待测。
2、工作液配制： 详见试剂的组成和配制中工作液的配制。
3、在 1mL 玻璃比色皿中加入如下试剂
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反应液 |
100 |
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工作液 |
900 |
混匀，测定 340nm 下 5min 后吸光值 A1 与 10min 后吸光值 A2 ，ΔA=A1-A2。
TPS 活力计算：
1、按照蛋白浓度计算
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
TPS 活力(nmol/min/mg prot)=ΔA×V 反总÷ ( ε×d）×109÷（V 样×Cpr）÷T×3
=643×ΔA ÷Cpr
2、按样本鲜重计算
单位的定义：每 g 组织每分钟催化 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
TPS 活力(nmol/min/g 鲜重)=ΔA×V 反总÷ ( ε×d）×109÷（W× V 样÷V 样总） ÷T×3
=643×ΔA÷W
3、按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
TPS 活力(nmol/min/104 cell)=ΔA×V 反总÷ ( ε×d）×109÷（V 样×细胞数量）÷T×3
= 1.28×ΔA
V 反总：反应体系总体积，1mL；ε：NADH 摩尔消光系数， 6.22×103 L / mol /cm；d：比色 皿光径， 1cm；V 样：加入样本体积， 0.15 mL；V 样总：加入提取液体积， 1 mL；T：反应 时间， 5 min；3，稀释倍数；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量；细胞数量， 500 万。
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资料/datasheet
